本应用纪要介绍了一种高灵敏度发现HCP的分析方法,该方法能够对高纯度单克隆抗体中亚ppm级的HCP进行鉴定和定量。
残留的宿主细胞蛋白(HCP)是低浓度(通常低于100 ppm)的工艺相关杂质,即使经过大量纯化工作,仍然可能存在于蛋白类生物药物中。HCP可能使患者产生不良免疫反应,降低药物的有效性或稳定性,或导致药物降解1。 由于这些原因,监管机构在批准药品之前需要对HCP进行鉴定和定量。生物制药行业依靠ELISA试验来测量总HCP浓度,以ppm(或ng HCP/mg生物药物)为单位。近年来,基于质谱的HCP分析已成为ELISA的优质替代方案2-6,因为它提供了更广泛的(蛋白质组范围内)HCP覆盖范围,并且能够鉴定和测量单个HCP的含量。
从美国国家标准技术研究所(NIST)购得采用小鼠细胞培养物制得的高纯度mAb(NIST mAb候选参比LRM 8670),浓度为100 mg/mL。使用Eli Lilly & Company的Huang等人首先提出的改良方案对NIST mAb进行酶解3。在装有100 µg Lys-C/胰蛋白酶混合物(Promega, Madison, WI)的玻璃样品瓶中进行mAb酶解。将125 µL NIST mAb与50 µL的100 mM CaCl2和625 µL的100 mM碳酸氢铵混合。在37 °C下酶解过夜(约16 h)。然后使用0.05% RapiGest对mAb样品进行变性处理(在60 °C下处理1 h),使用25 mM二硫苏糖醇(DTT)进行还原(在60 °C下处理1 h),并用12 mM碘乙酰胺(IAM)进行烷基化(在避光的室温环境下处理45 min)。在烷基化步骤中,mAb开始沉淀。加入5 µL甲酸(FA)后,将酶解物在37 °C下温育30 min,然后离心(10 min, 13000 × g),以分离沉淀的mAb和RapiGest表面活性剂。所有酶解试剂(CaCl2、NH4HCO3、DTT、IAM和FA)均购自Sigma-Aldrich(美国密苏里州圣路易斯)。将上清液转移至自动进样器样品瓶(沃特世部件号186000327C)中,按以下浓度添加五种MassPREP蛋白质酶解物标准品:100 nM ENL(酵母烯醇酶,部件号186002325)、40 nM ClpB(Hi3大肠杆菌,部件号186006012)、20 nM ADH(酵母乙醇脱氢酶,部件号186002328)、20 nM PHO(兔磷酸化酶b,部件号186002326)和5 nM BSA(牛血清白蛋白,部件号186002329)。在50 µL进样样品中,各种加标蛋白质的柱上进样量分别为:5000 fmol ENL、2000 fmol ClpB、1000 fmol ADH、1000 fmol PHO和250 fmol BSA。LC-MS级试剂(乙腈(ACN)和水)购自Thermo Fisher Scientific(麻萨诸塞州沃尔瑟姆)。
液相色谱系统: |
ACQUITY UPLC I-Class PLUS |
色谱柱: |
ACQUITY Premier CSH C18色谱柱, 1.7 µm, 2.1 × 150 mm(部件号:186009462) |
柱温: |
60 °C |
流速: |
50 µL/min |
流动相: |
溶剂A:0.1%甲酸的去离子水溶液 溶剂B:0.1%甲酸的乙腈溶液 |
进样体积: |
50 µL |
清洗溶剂: |
灌注溶剂:50%甲醇 样品管理器清洗溶剂:50%甲醇 |
质谱系统: |
SYNAPT XS QTof质谱仪 |
电离模式: |
ESI+ |
毛细管电压: |
2.5 kV |
锥孔电压: |
40 V |
电离源补偿: |
4 V |
离子源温度: |
120 °C |
脱溶剂气温度: |
300 °C |
锥孔气流速: |
35 L/h |
脱溶剂气流速: |
600 L/h |
雾化器气压: |
7 bar |
数据采集: |
HDMSE模式 |
质量范围(m/z): |
50-2000 |
扫描速率: |
1.0 s |
低能量CE: |
6 V |
高能量CE梯度: |
传输查找表(LUT),CE在0~85 V范围内 |
数据采集软件: |
MassLynx 4.2 SCN 1009 |
数据处理软件: |
Progenesis QI for Proteomics v4.2 |
注:CE值与肽段母离子的IMS漂移时间相关(UDMSE采集) |
NIST mAb (100 mg/mL)中包含的HCP杂质之前已经过表征2-6。 三家实验室使用相同的实验设置:二维微升级色谱(高pH RP/低pH RP)与SYNAPT G2-Si质谱仪联用系统,总共鉴定出35种HCP,其中14种HCP是共同的。该方法的检测限为1 ppm2。
近年来推出了若干替代性样品制备方案,以便提高LC-MS分析鉴定mAb样品中更低浓度HCP的灵敏度。这些方案包括:依靠mAb沉淀去除主要药物4、使用低分子量过滤器去除mAb并浓缩HCPs5,或是在蛋白质水平上采用HILIC分离技术去除主要样品组分并富集HCP6。本文采用Eli Lilly and Company提出的NIST mAb沉淀方案4,从而大幅减少LC-MS分析过程中由丰度更高的NIST mAb肽引起的离子抑制和干扰现象。与在胰蛋白酶酶解之前进行蛋白质变性、还原和烷基化的传统酶解方案不同,该方法依赖于天然构象的mAb对胰蛋白酶酶解的抗性。因此,与mAb相比,以非共价键连接至mAb的HCP更容易被胰蛋白酶酶解,而mAb即使经过长时间(过夜)酶解仍然大致保持完整。根据该方案,在胰蛋白酶酶解后,对样品进行变性、还原和烷基化处理,以便通过离心沉淀并去除主要样品组分。我们的酶解方案(详述见实验部分)也可应用于其他mAb产品。
同时采用MSE和HDMSE采集模式对酶解样品重复分析三次,利用Progenesis QI for Proteomics v4.2处理数据集,进行HCP鉴定和定量。仅报告在所有三次LC-MS重复测定中鉴定出的HCP,其中每种蛋白质包含3个及以上肽段。MSE采集只能鉴定出丰度最高的5种HCP,检测限达到约10 ppm(数据未提供)。与MSE相比,HDMSE采集能够鉴定出明显更多的HCP(48种),检测限改善至100倍,达到了100 ppb的检测水平。在所有3次重复测定中鉴定出的所有HCP(3个数量级)详见表1。与MSE相比,HDMSE的灵敏度大幅提高,因为在该采集模式下,共洗脱肽段母离子在碎裂之前通过非常快速(15~20 ms)的离子淌度过程得到分离。因此,SYNAPT XS质谱仪提供了更清晰的MS/MS碎片离子谱图,从而鉴定出更多的HCP。此外,通过使转移室上施加的CE与肽段母离子的IMS漂移时间同步,在HDMSE模式下进一步优化了用于肽段碎裂的碰撞能量(CE)。
对HDMSE实验中鉴定出的HCP列表与此前发布的两份出版物4,6中报道的HCP鉴定结果进行比较,结果汇总于图2所示的文氏图中。所有三个数据集都包含本研究组初次报道的14种HCP的子集2。此外,这三个数据集均包含由单一实验室鉴定出的HCP的特有子集:在我们的案例中,采用SYNAPT XS通过HDMSE采集仅鉴定出20种HCP。在这20种HCP中,有14种HCP(表1中以黄色突出显示)的浓度在ppm级以下(100~1000 ppb),表明该分析方法具有优异的灵敏度。显然,虽然更容易鉴定出NIST mAb样品中包含的高丰度HCP,但是采用各种不同的样品制备程序似乎都鉴定出一些独特的低浓度HCP。这一结果表明需要尝试采用不同的样品制备方法,以便对具有挑战性的mAb样品进行全面的HCP分析。
720007101ZH,2021年1月