在本应用纪要中,我们将ACQUITY UPLC I-Class与Xevo TQ-XS联用,开发出一种UPLC-MS/MS多残留分析方法,用于测定水果、蔬菜、谷类和红茶提取物中的552种农药和相关代谢物
随着人口增长,食品消费需求以及食品业的全球贸易也在不断增加。在全球范围内,日常用于农作物保护的农药高达数百种,上市商品中遗留的痕量农药称为“残留”。监管机构规定了农药最大残留量(MRL),即,当按照良好农业规范合理使用农药时,食品和饲料内部或表面可允许存在的农残量。由于复杂基质中使用的农药种类越来越多,并且要求较低的检测限,多残留分析方法因此面临诸多挑战。
我们针对多种食品类商品开发了一种能够检测552农药和相关代谢物的多残留分析方法。通过以下几种代表性商品的提取物来评估UPLC-MS/MS方法的性能:高含水量(菠菜)、高酸和高含水量(草莓)、高油和非常低的含水量(大豆)、高蛋白和低含水量与脂肪量(小麦面粉)商品,以及难以检测的或特殊的商品(红茶)。
选择不同商品类别的几种代表性样品:高含水量(菠菜)、高酸和高含水量(草莓)、高油和非常低的含水量(大豆)、高蛋白和低含水量与脂肪量(小麦面粉)商品,以及难以检测的或特殊的商品(红茶)。从当地零售店购买这些样品。购得样品之后立即使用料理机进行匀浆处理,然后冷冻储存以待提取。使用QuEChERS CEN方法提取样品。对于高含水量样品,如菠菜和草莓,根据欧盟参考实验室(EURL)的水果与蔬菜农药残留分析方法制备样品1。对于中等含水量或低含水量样品,例如大豆和小麦面粉,使用EURL的谷类和饲料农药残留分析方法制备样品2。 对于低水含量和高碳水化合物含量的样品,例如茶,采用QuEChERS萃取方法进行样品净化3。
将256种农药混合物(详见附件)以八种浓度(0.0001至0.1 mg/kg之间)添加到菠菜、草莓、大豆、小麦面粉和红茶提取物中,评估UPLC-MS/MS方法的性能。基质匹配校准标准品的进样方式与批量样品分析类似;校准标准品包括三个基质匹配水平,每个水平重复进样(n=6)。
UPLC系统: |
配备FL样品管理器的ACQUITY UPLC I-Class |
色谱柱: |
ACQUITY UPLC HSS T3 色谱柱, 1.8 μm, 2.1 × 100 mm (186003539) |
进样器后端混合套件: |
50 μL扩充定量环 (430002012) |
流动相A: |
5 mM甲酸铵 + 0.1%甲酸水溶液 |
流动相B: |
5 mM甲酸铵的50:50 乙腈:甲醇溶液+0.1%甲酸 |
进样体积: |
5 μL(PLNO模式) |
柱温: |
40 °C |
样品温度: |
10 °C |
运行时间: |
19 min |
数据采集和处理: |
MassLynx 4.2和TargetLynx XS |
MS仪器: |
Xevo TQ-XS |
电离模式: |
电喷雾 |
极性: |
正离子和负离子模式 |
毛细管电压: |
+2.0/-2.0 kV |
脱溶剂气温度: |
300 °C |
脱溶剂气流速: |
1000 L/h |
离子源温度: |
150 °C |
锥孔气流速: |
150 L/h |
强洗针液(SNW): |
0.1%甲酸的乙腈溶液 |
弱洗针液(WNW): |
流动相A |
密封件清洗液: |
10%甲醇水溶液 |
使用Quanpedia数据库创建用于552种农药分析的LC-MS/MS方法。Quanpedia数据库使用一系列化合物特定MS参数(例如母子离子对、锥孔电压和碰撞能量)自动创建LC和MS采集方法以及处理方法。本研究使用的MS方法针对每种农药至少包含2个MRM母子离子对,因此一种方法至少有1000个MRM母子离子对。MS方法的Auto-Dwell功能可管理每个母子离子对的驻留时间,确保每个峰都拥有所需的数据点数量(10–14)。图2所示为在Quanpedia中创建多残留分析方法的示例。
本文所述的多残留方法专为分析各种具有不同化学性质的农药而开发。其中一些农药(如甲胺磷和高灭磷)的极性非常强,会在色谱图中较早出现。如果注入的样品含有中等含量(25%)的有机溶剂,先洗脱的化合物通常会出现伸舌峰和/或分叉峰。注入色谱柱之前降低样品稀释剂中的有机溶剂含量可能有助于改善先洗脱分析物的峰形。在进样器端口和色谱柱之间安装进样器后端混合套件,可将典型的QuEChERS提取物注入高含水量流动相中,不会影响峰形。进样前,先用高含水量流动相注满扩充定量环,增加进样体积,有助于将样品扩散到水性溶剂中随后转移到色谱柱。在这种方式下,仍然可以使用中等含量的(25%)有机溶剂制备样品,大多数农药仍然可溶于样品中,同时强极性分析物仍然可以呈现良好的峰形。图3展示了使用和未使用进样器后端混合套件时甲胺磷的峰形;安装扩充定量环后获得了良好峰形,定量结果更可靠且灵敏度更高,从而达到更低的检测限(LOD)。
如图4所示,在所有研究的基质中,甲胺磷的保留时间约为1.9 min,基线峰宽约为7 s。甲胺磷的保留时间大于色谱柱死体积对应保留时间的两倍(死体积时间为0.46 min)。
在所有基质的256种化合物中,大多数化合物的校准曲线显示,确定系数(R2)值大于0.99,反算浓度(残留)均在± 20% SANTE偏差范围内4。图5所示为代表性分析物甲氧隆在五种研究基质中的基质匹配校准曲线。
通过重复测定(n=6)三种浓度(0.005、0.01和0.05 mg/kg)的基质匹配标准品,计算出256种代表性农药的LC-MS/MS测量精度。该方法的测量精度良好,85%以上检出农药的峰面积RSD都小于10%(见图6)。
通过比较每种商品的基质匹配校准曲线斜率与溶剂校准曲线斜率,计算各种基质中256种化合物的基质效应。图7汇总了每种商品中观察到的基质效应的范围。所有商品都表现出一定程度的基质抑制作用(响应抑制>20%)和基质增强作用(分析物响应增加>20%),因此建议进行基质匹配校准。也可选择程序校准或标准加入法,补偿基质效应和回收率损失。
为了进一步研究基质效应,使用QuEChERS制备大豆样品,并对提取物进行稀释(稀释5倍和10倍)。使用粗提物和稀释后的提取物制备0.02 mg/kg的基质匹配校准品,并进行分析。为研究共提物的影响,对552种目标化合物启用了全扫描RADAR采集方法和MRM母子离子对。图8展示了各种大豆提取物的RADAR总离子流(TIC)叠加色谱图。在粗提物谱图(蓝色)的3.9 min处观察到一个明显的峰。根据该LC梯度,目标化合物3-羟基呋喃丹也在色谱图的3.9 min处洗脱。
共流出基质的共提物可能会引起离子增强/抑制作用或同量异位物质干扰。从插图8a可以看出,与大豆QuEChERS粗提物(蓝色)相比,将QuEChERS粗提物稀释10倍(黄色)时,3-羟基呋喃丹的峰面积几乎翻倍。这些QuEChERS粗提物经稀释后(如图8所示)可减少基质效应,同时仍然能达到所需的LOD,而无需净化样品。稀释还可以减少共提物进入系统的载量,延长UPLC色谱柱的使用寿命,减少仪器日常维护频率,同时提高分析效率。
使用TargetLynx XS计算并标记鉴定标准、保留时间和离子丰度比。样品中检出的每种分析物的保留时间和离子丰度比应与校准标准品的保留时间和离子丰度比相符4。在研究的全部基质中,所有256种代表性农药的保留时间均在±0.1 min的偏差范围内。对于所有256种化合物,基质匹配校准品分析的离子丰度比均在参比值的±30%范围内。
720006886ZH,2021年2月修订