Les solutions de workflow de Waters permettent de mesurer rapidement et avec exactitude les protéines intactes, afin de confirmer leur identité, leurs modifications et l’hétérogénéité des glycoformes. Il s’agit notamment des solutions suivantes :
Webinaire : Sélection et entretien des colonnes SEC pour les peptides et les protéines biothérapeutiques
Prenez rapidement et en toute confiance des décisions sur la base de données accessibles et de haute qualité, grâce au système LC/MS BioAccord avec ACQUITY Premier spécialement conçu pour le suivi en routine dans le cadre des procédés biopharmaceutiques et du développement de produits.
Avec le spectromètre de masse Xevo G3 Q-Tof, maximisez les informations sur les échantillons pour vos analytes et ayez une confiance totale dans vos résultats d’analyse, depuis la caractérisation détaillée jusqu’à la quantification juste, des petites molécules difficiles aux produits biothérapeutiques complexes.
Contrairement aux systèmes concurrents dotés d’options d’entrée restreintes ou de limitations de la fonction de balayage, ou nécessitant plusieurs plateformes, seul Waters propose une solution LC/MS hautement performante et polyvalente : le spectromètre de masse SYNAPT XS. Ce dernier permet une flexibilité optimale et une plus grande liberté de choix analytiques, au service de la créativité scientifique et du succès technique pour n’importe quelle application.
Élaboré grâce à une collaboration ciblée, le système SELECT SERIES Cyclic IMS associe la technologie innovante de séparation par mobilité ionique cyclique aux performances de pointe de la spectrométrie de masse à temps de vol, offrant ainsi aux chercheurs le moyen d’élargir le champ de leurs recherches scientifiques.
Éliminez le caractère imprévisible des pertes d’analytes dues aux interactions métalliques grâce aux solutions MaxPeak Premier, qui associent des technologies de pointe pour les colonnes et les systèmes, assurant une sensibilité et une reproductibilité maximales.
Exploitez le détecteur DAWN MALS après une LC pour analyser le rapport protéines/complexes, les modifications post-traductionnelles et l’agrégation, et vous aider à chaque étape du développement. Utilisez-le avec le système Eclipse pour mesurer l’affinité de liaison lors de la recherche.
Réalisez des examens DLS, SLS et ELS sur une même plateforme avec l’instrument DynaPro ZetaStart : spécialement conçu pour le domaine biopharmaceutique, il permet de mesurer le potentiel zêta dans des tampons de formulation sans dilution.
Mesurez la taille, la polydispersité et les données Tagg de centaines d’échantillons avec seulement 4 µL par puits, grâce au lecteur de plaques DynaPro DLS. Celui-ci utilise des plaques à puits standard et s’intègre à n’importe quel système de manipulation des liquides pour accroître encore la productivité.
Suivez directement le titre, la taille et les impuretés en temps réel grâce au détecteur à diffusion de lumière multi-angles (MALS) ultraDAWN, qui combine parfaitement les méthodes de purification et d’enrichissement en aval, telles que IEX, FPLC ou TFF.
Analyse du matériau de référence NISTmAb 8671 sur une colonne XBridge Premier Protein SEC 250 Å et sur une colonne de silice dSEC-2 concurrente. Séparation isocratique réalisée avec une phase mobile de PBS dilué au 1/2 dans l’eau, un débit de 0,57 mL/min et une détection UV à 280 nm.
À l’aide du kit d’analyse en masse intacte UPLC, des cycles à gradient rapide ont été appliqués pour régénérer la colonne aux conditions de pré-injection dans le cadre de l’analyse d’un anticorps intact. Le chromatogramme en courant ionique total (TIC) ne montre aucune contamination croisée détectable à la suite d’une injection de 0,5 µg. Il n’est dès lors plus nécessaire de recourir à des injections de blanc inter-analyses avec des échantillons difficiles.
Analyse de la carte peptidique des fractions du trastuzumab. (A) Fractions de trastuzumab collectées à partir d’une colonne BioResolve SCX mAb, 4,6 × 100 mm. (B) Image miroir des cartes peptidiques des fractions 5 et 7. Un pic à un temps de rétention de 30,24 min était significativement augmenté dans la fraction 5 par rapport à celui de la fraction 7 (indiqué par la flèche bleue). (C) Chromatogrammes d’ion extrait (XIC) pour les peptides identifiés. Le pic à 30,26 min a été identifié comme étant une désamidation du peptide ASQDVNTAVAWYQQKPGK. Le pic non modifié a un temps de rétention de 29,63 min. (D) Comparaison de fragments MS/MS du peptide désamidé et non modifié ASQDVNTAVAWYQQKPGK. Les fragments ne contenant pas d’asparagine ont la même valeur de masse, tandis que les fragments en contenant diffèrent de 1 Da dans la masse.
Spectres MS combinés, zoom et masses déconvoluées MaxEnt1 correspondantes du trastuzumab obtenus en utilisant différents comptages IDC.
Séparation de l’étalon de sous-unité de mAb à l’aide d’un gradient de 1 minute et d’un gradient de 4 minutes sur une colonne de 20 mm, ainsi qu’un gradient de 20 minutes sur une colonne de 100 mm. Des spectres combinés comparables des trois pics principaux et de la masse déconvoluée (insertion) ont été obtenus.
Comparaison de la séparation LC/MS de l’étalon de sous-unité mAb sur une colonne BioResolve Premier RP mAb Polyphenyl 450 Å 2,7 µm de 2,1 x 20 mm (gradient de 4 minutes) et sur une colonne BioResolve RP mAb Polyphenyl 450 Å 2,7 µm de 2,1 x 100 mm (gradient de 20 minutes).
